白介素-8 ELISA KIT
白介素-8 ELISA KIT 是科研及临床前期研究中常用的检测工具,用于定量测定多种生物样本中的白介素 - 8(IL-8)含量 。
检测原理:采用双抗体夹心酶联免疫吸附测定法。试剂盒的微孔板上预包被了针对 IL-8 的特异性抗体。加入样本后,样本中的 IL-8 与固相抗体结合。接着加入酶标记的抗 IL-8 抗体,其与已结合在固相上的 IL-8 形成 “固相抗体 - IL-8 - 酶标抗体" 复合物。经过洗涤去除未结合物质,加入底物溶液(如 TMB),在酶的催化下,底物发生显色反应,颜色深浅与样本中 IL-8 的含量成正比。通过酶标仪在特定波长(通常为 450nm)下测量吸光度,与标准曲线对比,从而计算出样本中 IL-8 的浓度 。
试剂盒组成
酶联板:已包被抗 IL-8 抗体,有 96 孔或 48 孔规格,是反应的载体。
标准品:一般为冻干品,需用试剂盒提供的标准品稀释液复溶并稀释成不同浓度梯度,如 0、31.2、62.5、125、250、500、1000 pg/mL 等,用于绘制标准曲线。
样本xi释液:用于稀释浓度过高的待测样本,确保其浓度在试剂盒的检测范围内。
酶标抗体:即 HRP 标记的抗 IL-8 抗体,为浓缩液,使用时需按要求用酶标抗体稀释液稀释。
酶标抗体稀释液:专门用于稀释酶标抗体。
底物溶液:如 TMB 底物,与酶标抗体中的 HRP 发生反应产生颜色变化。
洗涤液:通常为浓缩液,使用时需按比例用蒸馏水或去离子水稀释,用于洗涤酶联板,去除未结合的物质,减少背景干扰。
终止液:一般为强酸溶液(如硫酸),用于终止底物的显色反应,使反应液颜色稳定,便于读数 。
封板膜:用于在温育过程中覆盖酶联板,防止液体蒸发和外界污染 。
使用说明书:详细介绍试剂盒的使用方法、注意事项、性能指标等 。
样本要求
血清:采集血液后,室温放置 2 小时或 4℃过夜,1000×g 离心 20 分钟,取上清备用。采血应使用无热原、无内毒素的一次性器材 。
血浆:可用 EDTA、肝素等抗凝剂。样本采集后 30 分钟内,2 - 8℃下 1000×g 离心 15 分钟,取上清 。
细胞培养上清:将细胞培养上清 1000×g 离心 20 分钟,去除细胞碎片和杂质后取上清 。
组织匀浆:用预冷的 PBS 冲洗组织,去除残留血液,剪碎组织后按 1:9(w/v)加入 PBS,冰上充分研磨。再经 5000×g 离心 5 - 10 分钟,取上清用于检测 。
样本采集后若短期内检测,可 4℃保存;若长时间保存,需 - 20℃或 - 80℃冻存,且避免反复冻融,溶血样本一般不适合检测 。
操作流程
准备工作:从冰箱取出试剂盒,平衡至室温(约 30 分钟)。稀释浓缩洗涤液。
加样:设置空白孔、标准品孔和样本孔。空白孔加样本xi释液,标准品孔加入不同浓度的标准品,样本孔加入处理好的样本,每孔加样量通常为 100μL,轻轻混匀,37℃温育 90 分钟 。
洗涤:弃去孔内液体,用洗涤液加满各孔,浸泡 1 - 2 分钟后甩干,重复洗涤 5 次,确保洗净未结合物质 。
加酶标抗体:每孔加入 100μL 稀释好的酶标抗体工作液,37℃温育 60 分钟 。
再次洗涤:同上述洗涤步骤 。
显色:每孔加入 90μL 底物溶液,轻轻混匀,37℃避光显色 15 - 30 分钟(根据实际显色情况判断) 。
终止反应:每孔加入 50μL 终止液,此时溶液颜色由蓝色变为黄色 。
读数:在加终止液后 15 分钟内,用酶标仪在 450nm 波长处测量各孔的吸光度(OD 值) 。
计算结果:以标准品浓度为横坐标,OD 值为纵坐标,绘制标准曲线。根据样本的 OD 值从标准曲线中查出对应的浓度,若样本进行了稀释,需乘以相应的稀释倍数得到实际浓度 。
性能指标
检测范围:常见为 31.2 - 2000 pg/mL 等不同区间,能满足多种样本中 IL-8 含量的检测需求 。
灵敏度:可低至 15.6 pg/mL 甚至更低,能检测到样本中微量的 IL-8 。
特异性:对 IL-8 具有高度特异性,与其他细胞因子等物质无明显交叉反应 。
重复性:板内变异系数一般小于 10%,板间变异系数小于 15%,保证了检测结果的稳定性和可靠性 。
注意事项
严格按照说明书操作,不同批次试剂盒试剂不能混用 。
操作过程中使用一次性吸头,避免交叉污染,加样要准确 。
洗涤充分是保证结果准确的关键,洗板不che底易导致假阳性 。
底物溶液对光敏感,需避光保存和使用,显色反应要在避光条件下进行 。
终止液有腐蚀性,操作时注意防护,避免接触皮肤和眼睛 。
建议标准品和样本均做复孔检测,以提高结果准确性 。该试剂盒仅用于科研,不可用于临床诊断 。